Arbeitsaufträge

Füllen Sie in jedes der 5 RG etwa 2 ml (eine Daumenbreite) Wasserstoffperoxid-Lösung ein.
RG 1: Dient zum Vergleich.
RG 2: Spatelspitze MnO2 zufügen und umschütteln.
RG 3: Kartoffelstückchen zufügen und umschütteln.
RG 4: Frisch gepressten Kartoffelbrei (Knoblauchpresse) zufügen und umschütteln.
RG 5: Spatelspitze Trockenhefe zufügen und umschütteln.
Weisen Sie das entstehende Gas nach! (Wie?)

Bereiten Sie 3 RG mit je einer Spatelspitze Trockenhefe vor.
RG 1: + ca. 2 mL (eine Daumenbreite) verdünnte Salzsäure, umschütteln und etwa 5 min lang einwirken lassen
RG 2: + ca. 2 mL verdünnte Natronlauge, umschütteln und etwa 5 min lang einwirken lassen
RG 3: + ca. 2 mL Leitungswasser, umschütteln und etwa 5 min lang einwirken lassen.
Prüfen Sie zwischenzeitlich den pH-Wert von Salzsäure, Natronlauge und Leitungswasser.
Fügen Sie dann zu allen 3 RG je 1 mL Wasserstoffperoxid-Lösung zu.Station

Bereiten Sie 4 RG vor:
RG 1: + Spatelspitze Trockenhefe + ca. 1 mL (halbe Daumenbreite) Leitungswasser. Kochen Sie den RG-Inhalt kurz auf und lassen Sie es danach abkühlen.
RG 2: + ca. 1 ml Leitungswasser + ca. 2 mL Wasserstoffperoxid-Lösung, 5 min lang in Eiswasser stellen.
RG 3: + ca. 1 ml Leitungswasser + ca. 2 mL Wasserstoffperoxid-Lösung, 5 min lang in Wasserbad mit der Temperatur des Leitungswassers stellen.
RG 4: + ca. 1 ml Leitungswasser + ca. 2 mL Wasserstoffperoxid-Lösung, 5 min lang in Wasserbad mit 37 °C stellen.
Fügen Sie zu RG 1 ca. 2 mL Wasserstoffperoxid-Lösung und zu den RG 2-4 je 1 Spatelspitze Trockenhefe hinzu und vergleichen Sie nach kurzem Schütteln die Intensität der Gasentwicklung.

Bereiten Sie 3 RG vor:
RG 1: Ca. 2 ml (eine Daumenbreite) Harnstoff-Lösung + 2 Tr. Phenolphthalein
RG 2: Ca. 2 ml Harnstoff-Lösung + 2 Tr. Phenolphthalein
RG 3: Ca. 2 ml N-Methylharnstoff-Lösung + 2 Tr. Phenolphthalein
Geben Sie zu den Versuchsansätzen in RG 2 und RG 3 je 1 mL Urease-Suspension und schütteln Sie kurz um. Stoppen Sie die Zeit bis zur Pinkfärbung des Inhalts

Bereiten Sie 3 RG vor:
RG 1: Ca. 2 ml (eine Daumenbreite) Harnstoff-Lösung (w = 2 %) + 2 Tr. Phenolphthalein
RG 2: Ca. 2 ml Harnstoff-Lösung (w = 2 %) + 2 Tr. Phenolphthalein
RG 3: Ca. 2 ml Harnstoff-Lösung (w = 50 %) + 2 Tr. Phenolphthalein
Geben Sie zu den Versuchsansätzen in RG 2 und RG 3 je 1 mL Urease-Suspension und schütteln Sie kurz um. Stoppen Sie die Zeit bis zur Pinkfärbung des Inhalts.

Bereiten Sie 5 RG vor:
RG 1: Ca. 2 ml (eine Daumenbreite) Harnstoff-Lösung + 3 Tr. Phenolphthalein
RG 2: Ca. 2 ml Harnstoff-Lösung + 2 mL dest. Wasser + 3 Tr. Phenolphthalein
RG 3: Ca. 2 ml Harnstoff-Lösung + 2 mL N-Methylharnstoff-Lösung + 3 Tr. Phenolphthalein
RG 2 und RG 3: Je ca. 1 ml Urease-Suspension.
Gießen Sie die Urease-Suspensionen (RG 2 und RG 3) zeitgleich zu den Versuchsansätzen von RG 2 und RG 3 und schütteln Sie kurz um. Beobachten Sie beide Versuchsansätze über einer weißen Unterlage.

Bereiten Sie 5 RG vor:
RG 1: Ca. 1 ml (halbe Daumenbreite) Urease-Suspension
RG 2: Ca. 1 ml Urease-Suspension + 3 Tr. Kupfersalzlösung
RG 3: Ca. 1 ml Urease-Suspension + 3 Tr. Nickelsalzlösung
RG 4: Ca. 1 ml Urease-Suspension + 3 Tr. Zinksalzlösung
RG 5: Ca. 1 ml Urease-Suspension + 3 Tr. Kochsalzlösung
Lassen Sie die Salzlösungen 2-3 min lang einwirken!
Während dieser Einwirkzeit bereiten Sie 5 weitere RG mit je 2 mL Harnstofflösung (eine Daumenbreite) und 2 Tr. Phenolphthalein vor.
Danach gießen Sie die Harnstofflösungen zu den Urease-Suspensionen und schütteln kurz um.

Bereiten Sie 4 RG vor:
RG 1: Ca. 1 ml (halbe Daumenbreite) Urease-Suspension .
RG 2: Ca. 1 ml Urease-Suspension + 3 Tr. Kupfer(II)-sulfatlösung
RG 3: Ca. 1 ml Urease-Suspension + 3 Tr. Kupfer(II)-sulfatlösung.
RG 4: Ca. 1 ml Urease-Suspension + 3 Tr. Kupfer(II)-sulfatlösung.
Lassen Sie die Kupfer(II)-sulfatlösungen 2-3 min lang einwirken!
Während dieser Einwirkzeit werden 4 weitere RG vorbereitet:
RG 1: Ca. 2 mL (eine Daumenbreite) Harnstofflösung + 3 Tr. Phenolphthalein + 1 mL H2O.
RG 2: wie RG 1.
RG 3: Ca. 2 ml Harnstofflösung + 3 Tr. Phenolphthalein + 1 ml EDTA-Lösung.
RG 4: Ca. 2 ml Harnstofflösung + 3 Tr. Phenolphthalein + 1 ml Cysteinlösung.
Dann gießen Sie die Harnstofflösungen zu den Urease-Suspensionen (RG 1 à RG 1, RG 2 à RG 2, usw.).
Notieren Sie die Beobachtungen nach 5, 15 und 30 Minuten. (Nehmen Sie den RG-Ständer der Station 8 für die weitere Beobachtung zur nächsten Station mit).

Pipettieren Sie 10 ml Harnstofflösung in das Schnappdeckelglas mit Rührfisch.
Schalten Sie dann den Magnetrührer ein und prüfen die Leitfähigkeit mit dem Leitfähigkeitsprüfer. Der Computer zeigt die Leitfähigkeit digital in mS (Millisiemens) an.
Wenn die Leitfähigkeit konstant bleibt, geben Sie 2 ml Urease-Suspension zu und klicken mit der Maustaste das grüne Feld "Start" an.

Beschriften Sie 3 RG mit "Lab", "Lab erhitzt" und "K" für Kontrolle.
Stellen Sie diese 3 RG mit 2 ml (eine Daumenbreite) frischer, pasteurisierter Milch ins Wasserbad mit 37 °C.
RG 4: Eine halbe, im Mörser zerriebene Hobbythek-Labtablette in 2 mL (eine Daumenbreite) Leitungswasser auflösen und den Inhalt von RG 4 auf RG 4 und RG 5 verteilen.
RG 5: Die Enzymlösung etwa 1 min lang aufkochen.
Geben Sie zum RG "Lab" 3 Tr. der nicht erhitzten "Lab-Lösung" (RG 4) und ins RG "Lab erhitzt" 3 Tr. der aufgekochten "Lab-Lösung" (RG 5). Stellen Sie beide RG nach dem Vermischen der Inhalte für 10 min in ein 37 °C-Wasserbad und notieren Sie alle 2 min ihre Beobachtungen